禽呼腸孤病毒(ARV)核酸檢測試劑盒(PCR法)

商品名稱：禽呼腸孤病毒(ARV)核酸檢測試劑盒(PCR法)

Name       ：Diagnostic Kit for Avian Reovirus Virus RNA (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】25T/盒、50T/盒

【預(yù)期用途】

本試劑盒適用于檢測全血、血漿或血清、滑膜、腱、關(guān)節(jié)和心臟等標(biāo)本中禽呼腸孤病毒（Avian reovirus， ARV）、番鴨呼腸孤病毒（Muscovy duck reovirus，MDRV）、新型鴨呼腸孤病毒（Novel duck reovirus，NDRV）中的 RNA，適用于幾種病毒感染的輔助診斷。其檢測結(jié)果僅供參考。

【檢驗原理】

本試劑盒用一對禽呼腸孤病毒特異性引物，結(jié)合一條特異性熒光探針，用一步法熒光 RT-PCR 技術(shù)對禽呼腸孤病毒 RNA 進(jìn)行體外擴增檢測，用于臨床上對可疑感染病料的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

說明：不同批號的試劑盒組分不可交互使用

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運輸、反復(fù)凍融不超過 5 次，有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI7500、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標(biāo)本采集】

病死或撲殺禽，取滑膜、腱、關(guān)節(jié)或心臟組織；待檢活禽，用注射器取血 5mL 至 EDTA-2Na 抗凝管。

【保存和運輸】

采集或處理好的樣品在 2℃~8℃條件下保存應(yīng)不超過 24 h；若需長期保存，應(yīng)放置-70℃以下保存，凍融不超過 3 次。

【使用方法】

1.  樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1  樣本前處理

每份組織分別從 3 個不同的位置稱取樣品約 1g，手術(shù)/剪剪碎混勻后取 0.5g 于研磨器中研磨，加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中，8000rpm 離心 2min，取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中；全血樣品待血凝后取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

1.2  核酸提取

推薦采用公司生產(chǎn)的核酸提取/或純化試劑（磁珠法或離心柱法）進(jìn)行核酸提取，   請按照試劑說明書進(jìn)行操作。

2.  試劑配制（試劑準(zhǔn)備區(qū)）

根據(jù)待檢測樣本總數(shù)，設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照；反應(yīng)管數(shù)每滿 10 份，多配制 1 份)，每測試反應(yīng)體系配制如下表：

將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中，20μL/管。

3.  加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟 1 提取的核酸、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 5μL，分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中，蓋好管蓋，混勻， 短暫離心。

4.  PCR 擴增（核酸擴增區(qū)）

4.1  將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi)；

4.2  設(shè)置好通道、樣品信息，反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL；

熒光通道選擇：檢測通道（ReporterDye）FAM，淬滅通道（QuencherDye）NONE，ABI 系列儀器請勿選擇 ROX

參比熒光，選擇 None 即可。

4.3  推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置：

5.   結(jié)果分析判定

5.1   結(jié)果分析條件設(shè)定（請參照各儀器使用說明書進(jìn)行設(shè)置，以分析 ABI7500 儀器為例）

反應(yīng)結(jié)束后自動保存結(jié)果，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用戶可根據(jù)實際情況自行調(diào)整，Start 值可設(shè)在 3～15、End 值可設(shè)在 5～20，使閾值線位于擴增曲線指數(shù)期，陰性質(zhì)控品的擴增曲線平直或低于閾值線），點擊 Analyze 自動獲得分析結(jié)果。

5.2   結(jié)果判斷

陽性：檢測通道 Ct 值≤40，且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線； 陰性：樣本檢測結(jié)果 Ct 值>40 或無 Ct 值。

5.3   質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品：無特異性擴增曲線或無 Ct 值顯示；

陽性質(zhì)控品：擴增曲線有明顯指數(shù)增長期，且 Ct 值≤32； 以上條件應(yīng)同時滿足，否則實驗視為無效。

6.   檢測方法的局限性

1. 樣本檢測結(jié)果與樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān)；

2. 樣本提取過程中沒有控制好交叉污染，會出現(xiàn)假陽性結(jié)果；

3. 陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏，會導(dǎo)致假陽性結(jié)果；

4. 病原體在流行過程中基因突變、重組，會導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

5. 不同的提取方法存在提取效率差異，會導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

6. 試劑運輸，保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測不準(zhǔn)確的結(jié)果；

7. 本檢測結(jié)果僅供參考，如須確診請結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測手段。

【注意事項】

1. 所有操作嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行；

2. 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化，混勻并短暫離心；

3. 反應(yīng)液應(yīng)避光保存；

4. 反應(yīng)中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

5. 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

6. 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行，以免交叉污染；

7. 實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器；

8. 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待，并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實驗室生物安全通則》進(jìn)行處理。